نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشیار گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی دانشکده کشاورزی دانشگاه بیرجند

2 عضو گروه پژوهشی گیاه و تنش‌های محیطی دانشکده کشاورزی دانشگاه بیرجند

3 دانش‌آموخته کارشناسی ارشد شناسایی و مبارزه با علف‌های هرز، دانشکده کشاورزی دانشگاه بیرجند

چکیده

شرایط محیط رشد گیاه مانند کاهش آب در دسترس گیاه بر خصوصیات مورفولوژیکی و فیزیولوژیکی گیاه اثر گذاشته که می‌تواند منجر به تغییر کارآیی علف‌کش‌ها در کنترل علف‌های هرز شود. بنابراین، این آزمایش باهدف بررسی کارآیی کلتودیم در کنترل علف‌هرز خونی‌واش در گلخانه تحقیقاتی دانشکده کشاورزی دانشگاه بیرجند در سال 1401 به‌صورت فاکتوریل بر پایه طرح کاملاً تصادفی انجام شد. تیمارهای آزمایش شامل غلظت علف‌کش کلتودیم در هفت سطح (صفر، 6.25، 12.5، 25، 50، 75 و 100 درصد توصیه شده در هکتار (120 گرم ماده موثره در هکتار)) و سطوح آبیاری در سه سطح رطوبتی خاک (50، 75 و 100 درصد ظرفیت زراعی) با 3 تکرار انجام شد. نتایج آزمایش نشان داد که صفات اندازه‌گیری شده شامل وزن تازه و خشک اندام هوایی و ریشه تحت تاثیر معنی‌دار غلظت کلتودیم، سطوح رطوبتی خاک و همچنین اثر متقابل غلظت کلتودیم در سطوح رطوبتی خاک قرار گرفت. نتایج آزمایش نشان داد که با کاهش سطح رطوبتی خاک، میزان دز موثر 90 درصد بازدارنده در صفت‌های وزن تازه و خشک اندام هوایی و ریشه به ترتیب 4.64، 7.21، صفر و 13.72 درصد در سطح رطوبتی 75 درصد ظرفیت زراعی و 86.24، 17.04، 85.35 و 32.51 درصد در سطح رطوبتی 50 درصد ظرفیت زراعی افزایش را نشان داد. نتایج آزمایش نشان داد که سطح رطوبتی 50 درصد ظرفیت زراعی در مقایسه با 100 درصد ظرفیت زراعی به میزان زیادی مقدار کلتودیم مورد نیاز برای کنترل خونی‌واش را افزایش داد. به‌طوری‌که با توجه به مقدار پارامتر دز موثر 90 درصد برای وزن تازه اندام هوایی، وزن خشک اندام هوایی، وزن تازه ریشه و وزن خشک ریشه به ترتیب 1.86، 1.17، 1.85، 1.33 برابر برای مشاهده نتایج مشابه با 100 درصد ظرفیت زراعی نیاز است. به عبارتی دیگر کارآیی کنترلی خونی‌واش توسط کلتودیم در شرایط کاهش رطوبت خاک به 50 درصد ظرفیت زراعی، به‌شدت کاهش می‌یابد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات

Abbott, L. B., Sterling, T. M., 2006. African rue (Peganum harmala) seedling response to herbicides applied under water-deficit stress. Weed Science, 54, 198-204. https://doi.org/10.1614/WS-05-086R.1
Abdolahi Norouzi, M. A., Benakashani, F., Soltani, E., Karimi, S., Akbari, G. A., 2024. Comparative study of influence of water stress on effectiveness of sulfosulfuron to two species of weeds through biomass and photo-physiological parameters. Crop Protection, 106589. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2024.10658
Aghabeigi, M., Khodadadi, M., 2017. Effect of clodinafop-propargyl and mesosulfuronmethyl herbicides on wild oat (Avena ludoviciana) control under moisture stress condition. International Journal of Plant and Soil Science, 20, 1–7. https://doi.org/10.9734/IJPSS/2017/38451
Alizade, S., Keshtkar, E., Mokhtassi‐Bidgoli, A., Sasanfar, H., Streibig, J.C., 2021. Effect of drought stress on herbicide performance and photosynthetic activity of Avena sterilis subsp. ludoviciana (winter wild oat) and Hordeum spontaneum (wild barley). Weed Research. 61, 288-2997. https://doi.org/10.1111/wre.12477
Alizade, S., Keshtkar, E., Mokhtasi-Bidgoli, A., Sasanfar, H., Streibig, J.C., 2020. Effect of water deficit stress on benzoylprop-ethyl performance and physiological traits of winter wild oat (Avena sterilis subsp. ludoviciana). Crop Protection, 137, 105292. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2020.105292
Benedetti, L., Rangani, G., Ebeling Viana, V., Carvalho-Moore, P., Rabaioli Camargo, E., Avila, L.A.D., Roma-Burgos, N., 2020. Recurrent selection by herbicide sublethal dose and drought stress results in rapid reduction of herbicide sensitivity in junglerice. Agronomy. 10, 16–19. https://doi.org/10.3390/agronomy10111619
Boydston, R.A., 1990. Soil water content affects the activity of four herbicides on green foxtail (Setaria viridis). Weed Science. 38, 578-582. https://doi.org/10.1017/S0043174500051523
Boydston, R.A., 1992. Drought stress reduces fluazifop-P activity on green foxtail (Setaria viridis). Weed Science, 40, 20-24. https://doi.org/10.1017/S0043174500056885
Chaves, M.M., Pereira, J.S., 1992. Water stress, CO2 and climate change. Journal of Experimental Botany. 43, 1131-1139. https://doi.org/10.1093/jxb/43.8.1131
Collings, L.V., Blair, A.M., Gay, A.P., Dyer, C.J., Mackay, N., 2003. The effect of weather factors on the performance of herbicides to control Alopecurus myosuroides in winter wheat. Weed Research. 43, 146-153. https://doi.org/10.1046/j.13653180.2003.00327.x
Farooq, M., Irfan, M., Aziz, T., Ahmad, I., Cheema, S.A., 2013. Seed priming with ascorbic acid improves drought resistance of wheat. Journal of Agronomy and Crop Science, 199, 12–22. https://doi.org/10.1111/j.1439-037X.2012.00521.x
Le, D., Morell, M., 2021. Influence of water regimes and herbicides for control of purple nutsedge (Cyperus rotundus). Advances in Weed Science, 39. e20210085 https://doi.org/10.51694/AdvWeedSci/2021;000015
Monaco, T.J., Weller, S.C., Ashton, F.M., 2002. Weed science: Principles and practices. New York, NY: John Wiley & Sons Inc., pp. 95–126.
Oyarzabal, E.S., 1991 Effect of weed water stress on postemergence herbicides activity. PhD dissertation, Iowa State University, Ames, IA.
Radchenko, M.P., Sychuk, А.M., Morderer, Y.Y., 2014. Decrease of the herbicide fenoxaprop phytotoxicity in drought conditions: the role of the antioxidant enzymatic system. Journal of Plant Protection Research. 54, 390–394. https://doi.org/10.2478/jppr-2014-0058
Rashed Mohassel, M. H., Aliverdi, A., Hammami, H., Zand, E., 2010. Optimizing the performance of diclofop‐methyl, cycloxydim, and clodinafop‐propargyl on littleseed canarygrass (Phalaris minor) and wild oat (Avena ludoviciana) control with adjuvants. Weed Biology and Management. 10, 57-63. https://doi.org/10.1111/j.1445-6664.2010. 00367.x
Rossi, F. S., Di Tomaso, J. M., Neal, J. C., 1993. Fate of fenoxaprop-ethyl applied to moisture-stressed smooth crabgrass (Digitaria ischaemum). Weed Science, 41, 335-340. https://doi.org/10.1017/S0043174500052024
Senseman, S.A., 2007. Herbicide Handbook. 9th ed. Weed Science Society of America., Lawrence, KS.
Singh, S., Kirkwood, R.C., Marshall, G., 1999. Biology and control of Phalaris minor Retz. (littleseed canarygrass) in wheat. Crop Protection, 18, 1-16. https://doi.org/10.1016/S02612194(98)00090-8
Srivastava, A.K., Pasala, R., Minhas, P.S., Suprasanna, P., 2016. Plant bioregulators for sustainable agriculture: integrating redox signaling as a possible unifying mechanism. Advances in Agronomy 137, 237-278. https://doi.org/10.1016/bs.agron.2015.12.002
Tabari, H., Talaee, P. H., Nadoushani, S. M., Willems, P., Marchetto, A., 2014. A survey of temperature and precipitation based aridity indices in Iran. Quaternary International, 345, 158-166. https://doi.org/10.1016/j.quaint.2014.03.061
Varanasi, A., Prasad, P.V., Jugulam, M., 2016. Impact of climate change factors on weeds and herbicide efficacy. Advances in Agronomy, 135, 107-146. https://doi.org/10.1016/bs.agron.2015.09.002
Vila-Traver, Jaime, Eduardo Aguilera, Juan Infante-Amate, and M. Gonzalez de Molina., 2021. Climate change and industrialization as the main drivers of Spanish agriculture water stress.  Science of the Total Environment 760, 143399.https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2020.143399
Wu, L.M., Fang, Y., Yang, H.N., Bai, L.Y., 2019. Effects of drought-stress on seed germination and growth physiology of quinclorac-resistant Echinochloa crusgalli. PLoS One 14, e0214480. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0214480
Zhang, X., Wang, X., Zhong, J., Zhou, Q., Wang, X., Cai, J., Dai, T., Cao, W., Jiang, D., 2016. Drought priming induces thermo-tolerance to post-anthesis high-temperature in offspring of winter wheat. Environmental and Experimental Botany, 127, 26-36. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2016.03.004
Zhou, J., Tao, B., Messersmith, C. G., Nalewaja, J. D., 2007. Glyphosate efficacy on velvetleaf (Abutilon theophrasti) is affected by stress. Weed Science, 55, 240-244. https://doi.org/10.1614/WS-06-173.1
Ziska, L.H., Dukes, J.S., 2011. Weed Biology and Climate Change. Blackwell Publishing Ltd.